«Маънавият» ва «Маърифат» сўзлари

Бактериологические  методы  

В соответствии с  современными программами ВОЗ, основой  выявления туберкулёза за рубежом  считают проведение микроскопии  мазков мокроты, полученной от кашляющих  больных, обратившихся к врачам общей  практики; мазки окрашивают по Цилю-Нильсену. Эта методика входит в отечественный  поликлинический и клинический  минимум обследования пациента, выделяющего  мокроту. В 1995 г. Минздравмедпром России в приказе № 8 "О развитии и  совершенствовании деятельности лабораторной клинической микробиологии (бактериологии) лечебно-профилактических учреждений" подтвердил эту обязанность клинико-диагностических  лабораторий. Обязательное бактериологическое исследование мокроты на М. tuberculosis должно быть организовано для нетранспортабельных  больных, больных хроническими заболеваниями  органов дыхания и мочевыводящей  системы, а также для работников неблагополучных по туберкулёзу  животноводческих хозяйств.  

При окраске флюоресцентным красителем аурамином-родамином микобактерии можно видеть при неиммерсионном 100-кратном увеличении. Более точен  результат при окраске по Цилю-Нильсену карболфуксином и иммерсионной микроскопии  при 1000-кратном увеличении. Именно окраска  мазка по Цилю-Нильсену рекомендована  при применении технологий DOTS.  

Окраска материала  по Цилю-Нильсену - наиболее употребимый  метод окраски М. tuberculosis. На фиксированный  мазок кладут кусочек фильтровальной бумаги, размерами не превышающий  размер покровного стекла; наливают на бумагу фуксин Циля и осторожно нагревают  его на горелке до появления пара, после чего оставляют препарат, чтобы  он немного остыл. Затем снимают  бумагу с фуксином, ополаскивают препарат водой, опускают в стаканчик с 5% р-ром  серной кислоты или смесью 10 частей спирта с 1 частью соляной кислоты, прополаскивают до обесцвечивания. Тщательно промывают  водой. Докрашивают любым раствором  метиленового синего в течение 3-5 мин. Мазок, окрашенный по Цилю-Нильсену, вместо докрашивания метиленовым синим  можно протравить насыщенным раствором  пикриновой кислоты (по Шпенглеру). Палочки, устойчивые к кислоте и спирту, окрашиваются в красный цвет, все  остальные микроорганизмы - в синий. Окрашенные по Цилю-Нильсену мазки  микроскопируют с иммерсионной системой не менее 10 мин. Если в окрашенном мазке  содержится не менее 5 микобактерий в  одном поле зрения (принято смотреть 100 полей), вероятность высева очень  высока.  

Наряду с мазком в развитых странах "золотым стандартом" считают посев мокроты на элективные среды (Лёвенштайна-Йенсена и др.) и определение чувствительности к туберкулостатикам. Но это уже  обязанность бактериологических лабораторий, наиболее профессионально работающих при ПТД или учреждениях Госсанэпиднадзора. Сильная бактериологическая служба при неинфекционных больницах скорее исключение, чем правило.  

Посев материала  на среду Лёвенштайна-Йенсена проводят в бактериологической лаборатории. Рост первых колоний на классических средах отмечают через 4-8 нед. Современные  методы с использованием высокоселективных  сред позволяют выращивать культуры за 1-2 недели, но идентификация микроорганизма требует дополнительного времени. Современную технику посева считают  очень информативной и в развитых странах в настоящее время  не проводят биологические пробы  с заражением морских свинок. М. tuberculosis обладает свойством вырабатывать ниацин, что отличает её от других микобактерий. Для более быстрой идентификации  микобактерий разработаны методы гибридизации нуклеиновых кислот.  

Если культура выделена, можно определить тип возбудителя  и его чувствительность к антибактериальным  препаратам. Для дифференциации возбудителя  особенно важно определять термостабильность  каталазы, поскольку это свойство отсутствует только у М. tuberculosis и  М. bovis, наиболее патогенных и вирулентных  для человека.  

Чувствительность  микобактерий к антибактериальным  препаратам оценивают с помощью  различных методов.