Санитарно-бактериологическое исследование питьевой воды. Оценка и оформление результата исследования

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ РФ

МЕДИЦИНСИЙ КОЛЛЕДЖ  ЖТИрГУПС

 

 

 

 

 

 

 

Реферат

Тема: «Санитарно-бактериологическое исследование питьевой воды. Оценка и оформление результата исследования»

 

 

 

 

                                                                     

 

  Выполнила:                                                                           

 

                                                          

                                                                                                      

                                                 

 

 

 

 

 

                                                

Иркутск,  
2013г.

 

Оглавление:

Пояснительная записка……………………………………………….3

I.Микробиологическое исследование воды…………………………4

II. Методика исследования воды……………………………………8

Вывод………………………………………………………………..21

Список использованной литературы………………………………..22

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Пояснительная записка

         Надежность и достоверность проведения профилактических и противоэпидемических мероприятий на объекте зависит от кратности обследования и учета санитарно-бактериологических показателей. Подготовленные нормативы на основные санитарно-бактериологические исследования объектов окружающей среды следует рассматривать как необходимый минимум при осуществлении текущего санитарного надзора. Эпидемиологи и санитарные врачи санэпидстанций должны ориентировать проведение исследований с расчетом на их индивидуальное применение к каждому объекту, учитывая особенность и специфику производства, степень его эпидемиологической значимости, материально-технического оснащения, квалификацию кадров, санитарную культуру и т.д.  Цели и задачи санитарно- микробиологического исследования воды является определение наличия в воде патогенной и условно-патогенной микрофлоры, и, следовательно, источника этого попадания, а также предупреждение распространения инфекционных заболеваний среди населения.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

      1. Микробиологическое исследование воды.

Среди объектов, подлежащих микробному контролю, важное место отводится исследованию воды. Микробное загрязнение воды более опасно, по сравнению с химическим, так при отсутствии у воды органолептических признаков загрязнения могут возникать массовые заражения, имеющие тяжёлые последствия. В этой связи, например, для питьевой воды не устанавливают нижнего переносимого предела (ПДК, как принято для химических веществ), а считают, что она должна быть свободна от патогенов.

В соответствии с действующими нормативными документами контролю подлежат:

- вода питьевая (централизованного и местного водоснабжения, т.е из водопровода, колодцев, родников и скважин);

- вода плавательных бассейнов;

-вода открытых водоёмов (из рек  водохранилищ);

- сточные воды;

- вода очищенная для приготовления  лекарств;

-вода для приготовления инъекционных растворов и глазных капель.

Предупредительный надзор осуществляют:

1) при решении вопросов водоснабжения  и канализации населённых территорий;

2) при санитарной оценке бассейнов , пляжей, мест коллективного отдыха  и т.д.

Текущий санитарный надзор осуществляют:

1) при оценке качества питьевого  водоснабжения населённых мест;

2) при оценке санитарного состояния  поверхностных вод для установления  степени влияния биологической  контаминации на способность  воды к самоочищению;

3) при контроле над обезвреживанием сточных вод;

4) по эпидемическим показаниям  для выяснения для выяснения  возможного пути передачи инфекционных  заболеваний (проводят обнаружение  санитарно-показательных и патогенных  микроорганизмов),

Контроль воды осуществляют в соответствии с имеющимися нормативами (табл)

Отбор проб. Пробы воды питьевой из разводящей сети городского водопровода отбирают работники центра Госсанэпиднадзора. Для отбора проб используют стерильные флаконы ёмкостью 500 мл. с притёртой резиновой, корковой или каучуковой пробкой. Предварительно проводят обжигание горящего тампона, смоченного спиртом, и спускают воду в течение 10-15 минут при полностью открытом кране. Бумажный колпачок с пробкой снимают с флакона  непосредственно перед заполнением, не касаясь руками горлышка  флакона и пробки.

Прбы воды из бассейнов в ходе эксплуатации отбирают  не менее чем в двух точках (глубокой и мелкой части) с 25-30 см. от поверхности  в количестве  одного литра один раз в месяц.

Пробы воды очищенной, используемой для приготовления лекарственных форм (кроме лекарств для инъекций и глазных капель) отбирают в количестве 500 мл. в стерильные бутылки, закрытые ватными пробками и бумажными колпачками. Пробы отбирают из бюретки, у которой предварительно обжигают кончик с помощью ватного тампона, смоченного спиртом.

Требования к микробиологической чистоте воды

Наименование обьекта контроля

Определяемые показатели микробиологической чистоты

Требование

Нормативный документ

Вода питьевая

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Вода плавательных бассейнов

 

 

 

 

 

 

 

 

Вода очищенная

 

 

 

 

 

 

 

 

Вода для инъекционных  растворов

 

 

1. Микробное число (КОЕ/мл) 2-3. Общие  термотолерантные коли-формные бактерии (в 3 пробах по 100 мл. воды)

4. колифаги (в 100мл. воды)

5. Споры сульфитредуцирующих  клостридий (в 20 мл воды)

 

1.Микробное число (КОЕ/мл)

 

2. Представители Enterobacteriaceae,

Staphylococcus aureus

3. Колифаги  (БОЕ/100 мл)

4. Патогенные микроорганизмы 

1. Микробное число (КОЕ/мл)

2. Представители Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus

 

 

 

 

 

 

 

Микробное число (КОЕ/мл)

Не более 50

Отсутствие

 

«

«

 

 

 

 

 

 

Не более 1000

 

 

Отсутствие

 

Не более 2

Отсутствие

 

 

 

 

Не более 100

Отсутствие

 

 

 

 

 

 

 

 

Не более 15 (обеспечивает апирогенность)

СанПиН

2.1.4.559-96

 

 

 

 

 

 

 

 

 

СанПиН

2.1.2.568-96

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ФС42-2619-97

 

 

 

 

 

 

 

 

ФС42-2620-97


Пробы воды очищенной  для приготовления инъекционных растворов  и глазных капель отбирают в стерильные флаконы в количестве 20 мл непосредственно  из баллона сразу же после перегонки или из сосудов, в которых вода стерилизуется

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

II. Методика исследования воды.

Общее микробное число. ОМЧ – количество мезофильных аэробных и факультативно- анаэробных бактерий  в 1 см3 (1мл) воды- определяют у всех видов воды. Исследуемую воду вносят по 1 мл в дне стерильные чашки Петри и заливают расплавленным и остуженным питательным агаром (метод глубинного посева). Инкубируют при 37»С24 ч, после чего при комнатной температуре ещё 24 ч. Подсчитывают на 2- х чашках число выросших колоний ( на поверхности и в глубине питательного агара) и рассчитывают среднее арифметическое значение. Для выявления плесневых и дрожжевых грибов исследуюмую воду засевают по 0,5 мл на среду Сабуро и инкубируют при комнатной температуре в течение 3 -4 сут. Подсчитывают число выросших колоний и так же рассситывают среднее арифметическое. Результат 9ОМЧ) вычисляют путём суммирования среднего арифметического  числа бактерияй, дрожжевых и плесневых грибов и выражают в КОЕ/мл.

Определение колиморфных бактерий.  Присутствие колиморфных бактерий также определяют в воде всех видов. Общие колиморфные бактерии это Гр- аспорогенные палочки, не обладающие оксидазной активностью и сбраживающие лактозу с образованием кислоты и газа при 37 С0 в течение 24 – 48 ч (или сбраживающие глюкозу с образованием кислоты и газа при температуре 37С0 в течение 24 ч). Термотолерантные полиморфные бактерии обладают теми же характеристиками, но дополнительно сбраживают лактозу с образованием кислоты и газа при 44,5 «С через 24 ч. Термотолерантные колиморфные бактерии быстро отмирают во внешней среде, поэтому их обнаружение свидетельствует о свежем фекальном загрязнение воды.

Для определения колиморфных бактерий в питьевой воде и воде очищенной используют метод мембранных фильтров. Исследуюмую воду (3 по 100 мл0 пропускают через 3 бактериальных фильтра из нитроцеллюлозы, которые затем помещают на среду Эндо и инкубируют при  370С 24 ч. Подсчитывают количество выросших на фильтрах лактозоположительных колоний, идентифицированных как колиморфные бактерии.

Определение колифагов. Присутствие  колифагов (бактериофагов. Паразитирующих на Е coll) определяют в воде поверхностных источников и питьевой воде, подготовленной из неё а также в сточных водах. Они являются индикаторами эффективности охраны грунтовых вод и очистки питьевой воды. Исследование проводят методом агаровых слоёв по Грациа. Для титрования колифагов исследуемую воду смешивают  с расплавленным и остуженным питательным агаром, куда вносят также индикаторный штамм Е.coli. Полученную смесь выливают вторым слоем на питательный агар в чашке Петри и после застывания среды чашку инкубируют  при 37 0С 24 ч. В  результате индикаторная культура образует равномерный сплошной рост, а при наличии колифагов в этом «газоне» образуются прозрачные бляшки («негативные колонии»). Результат исследования выражают  в бляшкообразующих единицах (БОЕ/мл).

Определение спор сульфит редуцирующих клостридий. Присутствие спор сульфитредуцирующих клостридий определяют в воде для оценки эффективности работы сооружений по подготовке питьевой воды. Для этого  испытуемую воду вносят в расплавленную и остуженную всреду Вильсона –Блера. Среда содержит тиосульфит (гипосульфит) и бесцветную соль железа. В результате прорастания спор , размножения клостридий  и восстановления ими сульфита образуется сульфид железа который придаёт среде черный цвет.

При использовании воды из поверхностных водоистчников, а также в крупных населённых пунктах питьевую воду исследуют ежедневно. В случае обнаружения колиморфных бактерий и/или колифагов проводят определение в воде возбудителей бактериальных и вирусных кишечных инфекций.

Ввиду того, что очистка и обеззараживание воды, а также существующие методы санитарно-микробиологического исследования воды  по ряду причин могут быть неэффективными, наилучшим способом обеспечения безопасности воды считается охрана водоисточников от микробного загрязнения.

1-й день исследования

 ТКБ и ОКБ.

Титрационный метод. Берут 3 стерильных флакона и 6 стерильных пробирок. В три флакона заливают по 10 мл. концентрированной ГПС и по 100 мл. исследуемой воды. В три пробирки наливают по 1 мл. концентрированной ГПС и по 10 мл. воды, в оставшиеся три пробирки  по 10 мл. ГПС нормальной концентрации и по 1 мл исследуемой воды. Предварительно перед посевом на дно каждого флакона и пробирок помещают поплавок

Если необходимо провести только качественное исследование то засевают только 3 флакона. Все посевы ставят в термостат -37 0С на 24 часа.

Для определения ОМЧ в две стерильные чашки Петри помещают по 1 мл. исследуемой воды, а затем заливают расплавленным  и остуженным до 450СМПА. Термостат- 37 0С на 24 часа.

Мембранный метод. Для данного метода используют фильтр Зейтца и фильтры с диаметром пор 0,48 мкм (№№5,6,7,8). Фильтры кипятят несколько раз  в дистиллированной воде, каждый раз меня воду, продолжительночть кипения -15- 30 минут. Не допускается бурное кипение.

Для качественной оценки проб воды используют фильтры обьёмом 300 мл, для количественной оценки фильтры объёмом 330 и 3 мл.

Фильтры укладывают на поверхность среды Эндо. Так чтобы они не соприкасались между собой. Термостат- 37 0С на 24 часа.

Споры сульфитредуцирующих бактерий определяют не всегда, в основном при исследовании ос=чистных сооружений и сточных вод. Для посева используют среду Вильсон-Блера. В расплавленную среду, нагретую до 750С засевают 20 мл. воды (в четыре пробирки по 5 мл. в каждую). Термостат - 37 0С на 24 часа.

Для определения колифагов  в исследуемой воде используют качественный и количественный метод.

Для качественного метода применяют музейный штамм культуры кишечной палочки К12 FR, так как у данного штамма колифаги лизируют как ДНК так и РНК. На среде Эндо такой штамм образует колонии бе металлического блеска бледно – розового цвета с ровными краями.

Для работы штамм ежедневно пересеивают на косячок МПА, а один раз в неделю пересеивают на среду Эндо. Для хранения культуры готовят 0,3 – 0,7% полужидкий питательный агар и производят посев штамма уколом в столбик. Пробирка помещается в термостат- 37 0С на 24 часа, затем культуру заливают стерильным вазелиновым маслом и хранят в холодильнике 9срок хранения до 1 года). Для исследования законсервированной штамм пересеивают в МПБ, с МПБ на среду Эндо, с Эндо на косячок МПА.

Для постановки пробы на колифаги 20 мл. исследуемой воды в стерильную чашку Петри и добавляют 30 мл. 2% расплавленного питательного агара со взвесью культуры К12FR и оставляют до застывания. (Приготовление взвеси – в косячок МПА наливают 5 мл. стерильной дистиллированной воды.Культуру эмульгируют,вращая между ладонями до получения однородной массы. Затем в стерильную пипетку набирают 1 мл поученной эмульсии и переносят в пробирку с 5 мл. воды.Сравнивают со стандартом мутности 10 ЕД. Если при сравнении мутность совпадает, берут 0,3 мл. взвеси и смешивают с 30 мл. питательного агара). Чашки петри переворачивают и помещают в термостат. Для контроля в одну из чашек Петри наливают 30 мл. агара и 0,3 мл. взвеси культуры К12 FR, без пробы исследуемой воды. Термостат- 37 0С на 24 часа.

При количественном  исследовании колифагов

Исследуемую пробу воды в количестве 100 мл. разлить на 6 объёмов: 1 флакон 50 мл. и 5 пробирок по 10 мл. В 50 мл пробы добавить 5 мл. десятикратногопитательного бульона и 0,5 мл. взвеси бактерий E.coli К12FR. В каждые 10 мл. пробы внести по мл. десятикратного питательного бульона и 0,1 мл. взвеси бактерий E coli К12FR.

Для контроля 0,1мл. взвеси бактерий E coli К12FR помещают в чашку Петри и заливают питательным агаром.

Посевы инкубируют при температуре 37 0С на 24 часа.

2- й день исследования

ТКБ и ОКБ.

Титрационный метод. Просматривают посевы на ГПС. Если цвет среды не изменился, то дают отрицательный ответ сразу по двум показателям  ТКБи ОКБ. Например : при качественном методе- «ОКБ не обнаружены», при количественном методе- «ОКБ в 100 мл. отсутствуют».

Если во флаконах наблюдается разложение  до кислоты и газа (изменение цвета среды и всплывание  поплавков) или только до кислоты (изменение цвета среды). Делают пересев Эндо с фуксином и молоком. Термостат-370С на 24 часа. Если во флаконах с ГПС произошло разложение только до кислоты, то ТКБ не определяют. Посевы ставят  в термостат при температуре 370С и просматривают через 5-6 часов. Окончательный результат  учитывают через 18 часов.

Мембранный метод. Просматривают рост на чашках Эндо с  посеянными фильтрами. При наличии подозрительных колоний проводят оксидазный тест. Если тест на оксидазу положительный. То дальнейшее исследование не проводят, если тест на оксидазу отрицательный, то ведётся дальнейшее исследование – пересев на полужидкую глюкозу и среду Олькеницкого.

Термостат-370С на 24 часа.

Определение ОМЧ. Подсчитывают число выросших колоний на обоих чашках, складывают и делят на два.

Сульфитредуцирующие клостридии. Просматривают посевы. При отсуствии роста выдают отрицательный результат. Если среда с разрывами и образовались белые пушистые колонии, то результат на среде вырастают чёрные или тёмно-коричневые колонии чечевицеобразной формы с почернением вокруг среды. Из подозрительных колоний готовят мазки, окрашивают по Грамму и микроскопируют с иммерсионной системой. При положительном результате  в мазках обнаруживают грамположительные палочки с обрубленными краями и спорами, расположенными терминально.

Количественному учёту подлежат  только те посевы, где получены изолированные колонии.

Результат анализа выражают числом колонеобразующих единиц (КОЕ) спор сульфитредуцирующих клостридий в 20 мл. воды

При отсуствии роста чёрных колоний дают ответ «не обнаружено» в 20 мл. воды».

При невозможности учёта колоний из-за сливного роста результат оценивается как качественный , в протоколе отмечают «обнаружено в 20 л.».

При необходимости получения количественного результата анализ повторяют

Колифаги.

При качественном исследовании

Просматривают чашки с посевами. На контрольной чашке роста и зон лизиса не должно быть. При наличии на остальных чашках роста без негативных бляшек, выдают отрицательный результат. Если бляшки есть, выдают положительный результат. Результат выдаётся с формулировкой «Колифаги в пробе не обнаружены» или «Колифаги в пробе обнаружены».

При количественном  исследовании колифагов.

После инкубации из объёма 50 мл. отлить в пробирку 10 мл. Вовсе исследуемые 6 объёмов добавить по 1 мл. хлороформа. Пробирки закрыть стерильными резиновыми или силиконовыми пробками. Энергично встряхивают для равномерного распределения хлороформа по объёму пробы

и оставить при комнатной температуре не менее 15 мин. Для осаждения хлороформа.

В предварительно расплавленный и остуженный до 45 0С питательны агар добавить приготовленную взвесь бактерий E coli К12FR из расчёта 1,0 мл. взвеси на 100 мл. агара. Приготовленную смесь разлить в чашки Петри: 1 чашку для контроля культуры  E coli К12FR на лизогенность и по одной чашке на каждую исследуемую пробу воды. При одновременном анализе нескольких проб воды ставится один контроль E coli К12FR

После застывания агара чашки, предназначенные для посева проб, разделить  на 6 секторов, промаркировать  их в соответствии с исследуемыми объёмами. На каждый сектор  из соответствующей пробирки или флакона нанести пастеровской пипеткой (микропипеткой или бактериологической петлёй продольным штрихом) по 1 капле надосадочной жидкости (без хлороформа).

После подсыхания капель чашки с исследуемыми пробами и контрольную чашку поместить  в термостат 370с на 24 часа.

3-й день исследования

ТКБ и ОКБ

Титрационный метод. Если на среде Эндо роста нет, то ставят отрицательный ответ. Если на среде Эндо обнаруживают тёмно-красные колонии с металлическим блеском или без него. То дают положительный ответ о присутствии ОКБ.

Если колонии розовые, то ставят оксидазный тест. При отрицательном результате на оксидазу производят посев на положительную глюкозу для определения ОКБ. Для определения ТКБ пересев производят на полужидкую лактозу. Термостат 440С на 24 часа.

Мембранный метод. Производят учёт роста на полужидкой глюкозе. Если глюкоза не разжижилась или разложилась только до кислоты, то ставят отрицательный результат. Если глюкоза разложилась до кислоты и газа определяют НВЧ ОКБ и ТКБ по таблице МУКа.

Колифаги.

 Учёт результатов: просмотр  результатов осуществляется в  проходящем свете. Учёт проводится  по наличию зон просветления (лизиса) на секторах газона E coli К12FR.

При применении капельного способа посева пипеткой образуется зона лизиса в виде округлого пятна или отдельных бляшек. При посеве продольным штрихом бактериологической петлёй отмечается лизис по ходу штриха.

Проба считается положительной при наличии зоны лизиса хотя бы на одном секторе при отсутствии зон лизиса на контрольной чашке.

Оценка проводится по таблице. В протоколе анализа указывается наиболее вероятное количество колифагов в 100 мл. воды и диапозон возможных колебаний: НВЧ БОЕ (нижний предел-верхний предел) колифагов 100 мл. Результат полуколичественный.

При наличии зон лизиса в контрольной чашке результат считать недействительным.

4-й день исследования.

ОКБ и ТКБ.

Титрационный метод. Производят учёт роста на полужидкойглюкозе и лактозе. Если углеводы не разложились только до кислоты, то ставят отрицательный результат. Если углеводы разложились до кислоты и газа определяют НВЧ и ТКБ по таблице МУКа.

 

Расчёт  наиболее вероятного числа бактерий в 100мл питьевой воды

Число положительных результатов

из

НВЧ бактерий

В 100 мл

Доверительный интервал (95%)

 

3 объёмов по 100мл

3 объёмов по 10 мл

3 объёмов

По 1 мл

  

Нижний         верхний

1

2

3

4

5

6

0

0

1

0,3

0

1,4

0

0

2

* <*>

    

0

0

3

*

    

0

1

0

0,3

0,1

1,4

0

1

1

*

    

0

1

2

*

    

0

1

3

*

    

0

2

0

0,6

0,1

2,8

0

2

1

*

    

0

2

2

*

    

0

2

3

*

    

0

3

0

*

    

0

3

1

*

    

0

3

2

*

    

0

3

3

*

    

1

0

0

0,4

0,1

1,7

1

0

0

0,7

0,2

3,4

1

0

2

*

    

1

0

3

*

    

1

1

0

0,7

0,2

3,4

1

1

1

1,1

0,2

5,2

1

11

2

*

    

1

1

3

*

    

1

2

0

1,1

0,2

5,3

1

2

1

*

    

1

2

2

*

    

1

2

3

*

    

1

3

0

*

    

1

3

1

*

    

1

3

2

*

    

1

3

3

*

    

2

0

0

0,9

0,2

4,3

2

0

1

1,4

0,3

6,7

2

0

2

*

    

2

0

3

*

    

2

1

0

1,5

0,3

6,9

2

1

1

2

0,4

6,9

2

1

1

2

0,4

9,6

2

1

2

*

    

2

1

3

*

    

2

2

0

2

0,5

9,9

2

2

1

3

0,6

12,9

2

2

2

*

    

2

2

3

*

    

2

3

0

3

0,6

13,3

2

3

1

*

    

2

3

2

*

    

2

3

3

*

    

3

0

0

2

0,5

10,8

3

0

1

4

0,8

18,0

3

0

2

6

1,4

29,7

3

0

3

*

    

3

1

0

4

0,9

20,0

3

1

1

8

1,6

35,0

3

1

2

12

2,5

53,8

3

1

3

*

    

3

2

0

9

2,0

43,6

3

2

1

15

3,2

69,8

3

2

2

21

4,6

100,3

3

2

3

29

6,2

136,4

3

3

0

24

5,1

112,1

3

3

1

46

9,3

216,0

3

3

2

110

23,5

516,6

3

3

3

>=240

-

-


<*> Вероятность ниже допустимого  уровня. Количественный учёт невозможен, результат оценивается качественно.

 

 

 

Методы санитарно-паразитологического исследования проб питьевой воды и их концентратов

 Метод порошковой фильтрации

Оборудование: отборник флотанта фильтрующий "ОФФ-25" в комплекте, центрифуга с качающимся ротором с прозрачными пластиковыми или стеклянными центрифужными стаканчиками объемом 100 - 150 мл.

Расходные материалы: аналитические трековые мембраны (АТМ) с диаметром диска 25 мм.

Реактивы и красители: раствор Люголя, красители или флуорохромы, флуоресцентно-меченые антитела, промывочные и фиксирующие растворы, флотирующая жидкость.

Порядок приготовления препарата для микроскопического исследования:

- взбалтывают смыв в бутылке  и разливают по центрифужным стаканчикам, доливают дистиллированной воды до верха стаканчика;

- центрифугируют в качающемся  роторе со скоростью 1000 - 1500 об./мин., 10 мин.;

- удаляют надосадочную жидкость.

Примечание 1.

Целесообразно провести предварительное отстаивание концентрата с целью уменьшения объема осадка. Для этого взбалтывают смыв ПробоКонга и дают ему отстояться 10 мин. для оседания крупной фракции. Надосадочную жидкость помещают в центрифужные пробирки. Полученный осадок также можно исследовать методом иммуномагнитной сепарации (п. 5.2) или ПЦР (п. 5.3);

- к осадку (примерно 20 мл без  предварительного отстаивания) приливают  флотирующую жидкость, объем которой  должен в 5 раз превышать объем  осадка (примерно 100 мл);

- осадок тщательно взбалтывают  стеклянной палочкой и отмечают на стенке пробирки маркером уровень жидкости;

- наслаивают сверху 5 - 10 мм дистиллированной  воды или применяемого физиологического  раствора.

Примечание 2.

Наслоение воды или физраствора предотвращает прилипание зерен к стенкам пробирки и возможное последующее загрязнение ими препарата для микроскопирования, а также испарение воды из флотирующей жидкости с выпадением кристалликов соли на объектах, приводящим к их "потоплению".

Не рекомендуется наслаивать водопроводную воду, т.к. ионы кальция и магния, содержащиеся в ней, образуют нерастворимые сульфаты при контакте с флотирующей жидкостью на основе сульфата цинка, что приводит к помутнению флотанта и возможной забивке микропористой мембраны;

- центрифугируют со скоростью 1500 - 2000 об./мин. 10 мин., при этом паразитарные агенты всплывают, а частицы порошкового фильтра оседают.

Примечание 3.

Стаканчики в роторе должны быть установлены в предназначенные для них ячейки, недопустимо устанавливать их в ячейки или стаканчики большего диаметра так, чтобы они могли раскачиваться (совершать прецессию) во время центрифугирования, что приводит к перемешиванию границы слоев растворов.

Не рекомендуется останавливать центрифугу тормозом;

- с помощью отборника флотанта  фильтрующего ОФФ-25 (по прилагаемой  инструкции) отбирают флотант на прозрачную трековую мембрану, промывают ее дистиллированной водой от флотирующей жидкости, обрабатывают красителями или флуоресцирующими антителами.

Примечание 4.

При отсутствии ОФФ-25 флотант можно отсосать пипеткой и перенести в центрифужную пробирку, разбавить не менее чем в 5 раз дистиллированной водой, центрифугировать 5 мин. при 1500 об./мин., надосадочную жидкость удалить, из осадка готовить препараты для микроскопирования или исследовать его методом иммуномагнитной сепарации или ПЦР;

- на чистое предметное стекло  наносят палочкой для иммерсионных  жидкостей каплю глицерина и  размазывают боковой поверхностью  этой палочки на участке под  фильтр;

- извлекают из ОФФ-25 мембрану  пинцетом (согласно инструкции), касаются  ее нижней стороной фильтровальной бумаги для удаления возможных капель воды и укладывают, постепенно опуская ее, начиная с края, на подготовленное предметное стекло, следя, чтобы не образовывались под мембраной пузыри; для лучшего пропитывания мембраны глицерином следует подождать несколько минут.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Вывод:

             Поскольку вода используется при производстве любого вида продукции, а также в пищу, соответствие ее качества санитарно- микробиологическим показателям чрезвычайно важно. Водным путем могут передаваться кишечные инфекции - холера, брюшной тиф и паратифы, сальмонеллез, дизентерия, гепатит А, полиомиелит, а также лептоспирозы, сибирская язва, туляремия, туберкулез, сап, Ку-лихорадка, различные грибковые заболевания. Для того, чтобы предупредить различные инфекционные заболевания, необходимо проводить мониторинг исследования питьевой воды.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Список использованной литературы:

 

1.Санитарные правила и нормы. «Питьевая вода. Гигиенические требования  к качеству воды централизованных систем водоснабжения. Контроль качества» СП 2.1.4.1074-01

Санитарно-бактериологическое исследование питьевой воды. Оценка и оформление результата исследования 📙 Реферат → 🆔 245583

Санитарно-бактериологическое исследование питьевой воды. Оценка и оформление результата исследования 📙 Реферат → 🆔 245583

Санитарно-бактериологическое исследование питьевой воды. Оценка и оформление результата исследования