Пистициды в продуктах питания

Содержание 
 

Введение 

1. Общие сведения  о хлорорганических соединениях 

2. Хлорорганические  пестициды в продуктах питания  и методы их определения 

Литература 
 

Введение 
 

Пестициды являются единственным загрязнителем, который  сознательно вносится человеком  в окружающую среду. Применение пестицидов позволяет получать стабильные урожаи и ограничивать распространение  инфекций, передаваемых животными-переносчиками, например, малярии и сыпного тифа. Однако непродуманное использование  пестицидов имеет и негативные последствия. Пестициды поражают различные компоненты природных экосистем: уменьшают  биологическую продуктивность фитоценозов, видовое разнообразие животного  мира, снижают численность полезных насекомых и птиц, а в конечном итоге представляют опасность и  для самого человека. 

Длительное хранение пестицидов на неприспособленных складах  и в разрушенной таре приводит к сильному загрязнению окружающей среды: почвы, водных питьевых источников (даже артезианских вод), в целом  агроландшафтов. Оно ведет к появлению устойчивых к ним видов организмов, особенно среди насекомых; губит хищников (естественных врагов вредителей) и других полезных животных. Последнее вызывает резкое увеличение устойчивости к пестицидам возбудителей опасных болезней растений. Например, сейчас уже 110 видов наиболее опасных фитопатогенных грибов стали высокоустойчивыми к 50 наиболее распространенным фунгицидам. А ведь грибные болезни вызывают 80% потерь урожая сельскохозяйственных культур. 

Особую опасность  представляют хранящиеся стойкие органические загрязнители: хлорорганические соединения, ртутьорганические протравители, а  также обладающие высокой токсичностью фосфорорганические и медьсодержащие пестициды, нитросоединения. 

Пестициды распространяются на большие пространства, весьма удаленные  от мест их применения. Поэтому весьма актуальна проблема определения  пестицидов в окружающей среде и  продуктах питания. 

1. Общие сведения  о хлорорганических соединениях 
 

Хлорорганические  соединения. Физико-химические свойства и применение. Хлорорганические соединения (ХОС) широко применяют в качестве инсектицидов, акарицидов и фунгицидов для борьбы с вредителями зерновых, зернобобовых, технических и овощных  культур, лесонасаждений, плодовых деревьев и виноградников, а также используются в медицинской и ветеринарной санитарии для уничтожения зоопаразитов и переносчиков болезней. Выпускают  их в виде смачивающихся порошков, минерально-масляных эмульсий, дустов. У нас разрешены для применения следующие препараты: гексахлорциклогексан (ГХЦГ), гамма-изомер ГХЦГ (линдан), гексахлорбутадиен (ГХБД), дилор, мезокс, полихлоркамфен (ПХК), тедион, каптан, тиодан и некоторые другие. Запрещено использовать такие опасные пестициды, как альдрин, дильдрин, эндрин и галекрон, ДДТ. Однако ДДТ пока сохраняет свое значение в карантинных ситуациях. Благодаря резко выраженным кумулятивным свойствам и персистентности он пока циркулирует в объектах внешней среды. 

ХОС представляют собой  галоидопроизводные многоядерных циклических  углеводородов (ДДТ и его аналоги), циклопарафинов (ГХЦГ и его аналоги), соединений диеного ряда (альдрин, дильдрин, гексахлорбутадиен, гептахлор, дилор), терпенов (ПХП и ПХК), бензола и других соединений. 

Все ХОС плохо  растворяются в воде и хорошо в  органических растворителях, маслах и  жирах. Причем в пресной воде растворимость их выше, чем в соленой (эффект «высаливания»). В водоемах они поглощаются частицами органических веществ и осадком, вследствие чего их свойства и локализация могут меняться в разных типах водоемов. В акваториях, загрязненных нефтью, возникает опасность концентрирования ХОС в пленке, растворимых фракциях и в донном осадке. 

ХОС обладают высокой  химической стойкостью к воздействию  различных факторов внешней среды, относятся к группе высокостабильных и сверхвысокостабильных пестицидов. В почве ДДТ сохраняется 12 и более лет, ПХП н ПХК – до 0,5 – 2 лет, линдан и кельтан – до одного года. Коэффициент выноса ХОС из почвы с поверхностным стоком составляет для ДДТ 0,02 – 0,3%, ГХЦГ – 0,06 – 0,10%, что соответствовало концентрации в воде 0,03 – 0,3 мкг/л (Ц.И. Бобовникова и др.). Обладая этими свойствами, ХОС накапливаются в гидробионтах и передаются по пищевой цепи, увеличиваясь примерно на порядок в каждом последующем звене. Однако не все препараты обладают одинаковой персистентностью и кумулятивными свойствами. В гидросфере и организме гидробионтов они постепенно разлагаются с образованием метаболитов. По вышеназванным причинам в зонах интенсивного земледелия остатки ХОС и метаболитов в организме гидробионтов обнаруживаются постоянно, что следует учитывать при диагностике отравлений. 

В пресных и морских  водоемах, а также гидробионтах, помимо хлорорганических пестицидов, встречаются сходные с ними полихлорированные бифенилы (ПХБФ) и терфенилы (ПХТФ), используемые в промышленности. По своим физико-химическим свойствам и физиологическому действию на организм, а также методам анализа они весьма близки к хлорорганическим пестицидам. Поэтому необходима дифференциация этих групп хлорированных углеводородов. 

Токсичность. Механизм действия ХОС на рыб во многом сходен с их влиянием на теплокровных животных. Рыбы и другие водные организмы более  чувствительны к ХОС, чем наземные животные. Особенно чувствительны к  ХОС водные ракообразные и насекомые, которых нередко используют для  контроля загрязнения воды как индикаторные организмы. 

В организм рыб ХОС  поступают осмотически через жабры и через пищеварительный тракт с кормом. Интенсивность поглощения ХОС рыбами увеличивается при повышении температуры воды. Гидробионты способны концентрировать ХОС в гораздо больших количествах, чем в окружающей среде (воде, грунте), коэффициент накопления этих веществ составляет в грунте 100, зоопланктоне и бентосе – 100 – 300, рыбах – 300 – 3000 и более. По этому показателю они относятся к группе веществ со сверхвысокой или с выраженной кумуляцией. Суммарные концентрации ХОС в воде пресных и морских водоемов обычно ниже микрограмма на литр. 

В первую очередь  ХОС накапливаются в органах  и тканях, богатых жирами или липоидами. У рыб их больше всего находят  во внутреннем жире, головном мозге, желудочной и кишечной стенке, гонадах и печени, меньше – в жабрах, мышцах, почках и селезенке. С возрастом рыб  отмечено увеличение концентрации ХОС. При метаболизме жиров во время  голодания и миграции рыб, а также  при стрессовых состояниях накопленные  в организме ХОС могут вызвать  отравления рыб. 

ХОС относят к  ядам политропного действия с преимущественным поражением центральной нервной  системы и паренхиматозных органов, особенно печени. Кроме того, они  вызывают расстройство функций эндокринной  и сердечнососудистой системы, почек  и других органов. ХОС также резко  угнетают активность ферментов дыхательной  цепи, нарушают тканевое дыхание. Некоторые  препараты блокируют SH-группы тиоловых ферментов. ХОС опасны для рыб своими отдаленными последствиями: эмбриотоксическим, мутагенным я тератогенным действием. Они снижают иммунологическую реактивность и повышают восприимчивость рыб к инфекционным болезням. ХОС относятся к группе высокотоксичных для рыб соединений (см. таблицу).

Название и синонимы препаратов Виды рыб Летальные концентрации CK50 по ДВ 
 

      мг/л экспозиция

ДДТ (дихлордифенил трихлорэтан, азотокс, 

      0,032 36 ч

дикофан, пентахлорин Лосось 0,08 36 ч

и др.) Щука 0,05* 48 ч 

      Карась 0,07 – 0,03 96 ч

ДДТ э. к. Карп 0,25 – 0,35** 48 ч

ДДТ с. п. Карп 5,0** 48 ч

Гамма-изомер ГХЦГ Карп 0,17 – 0,28 48 ч

90%-ный технический  э. к. Радужная форель 0,3* 48 ч

(гексахлорциклогексан, 

      0,2* 48 ч

ГХЦГ, линдан, гамма-изомер) Пескарь 0,08 96 ч 

      Плотва 0,08 24 ч 

      Карась 0,12 48 ч

Гексахлоран технический (8 – 12% гамма-изомера ГХЦГ) Карп 2,5 – 12,5** 96 ч

Гептахлор (велзикол 104, гептамюль) Карп, радужная форель, щука 0,4 – 0,6* 48 ч 

      Разные  виды рыб 0,008 – 0,019 96 ч

Гексахлорбензол Те же 0,25 – 3,6 96 ч

Полихлоркамфен (ПХК, токсафен, килфен и др.) Радужная форель 0,23* 48 ч 

      Окунь 0,16 24 ч 

      Плотва 0,26 24 ч 

      Карп, толстолобик 0,22 96 ч 

      Верховка 0,04 96 ч 

      Вьюн 0,18 96 ч 

      Карп 0,022* 25 дн.

Полидофен (40% ПХК + 20% ДДТ) Карп 0,17 96 ч

Полихлорпинен (ПХП, стробан) Карп, линь Пелядь 1,0* 0,5* 24 ч 24 ч 

      Щука 0,25* 24 ч 

      Плотва, налим 0,1* 24 ч 

      Окунь 0,05* 24 ч

Метоксихлор (марлат) Разные рыбы 0,04 96 ч

Калган (ортоцид) Радужная форель 0,25* 24 ч 

      Карп 0,25 24 ч

Кельтан (дикофол, хлорэтанол) Карп 2,16 – 2,93 96 ч 

      Молодь  верховки и пескаря 1,55 – 1,62 96 ч

Тиодан (эндосульфан, малике, циклодан, ти 

      0,01* 48 ч

мул) Щука 0,005* 48 ч 

      Карп 0,011 48 ч 

      Разные  виды рыб 0,001 – 0,009 48 ч 
 
 

Хроническое отравление карпов ПХК и полидофеном наступает при концентрациях до 1/100 от CK50 (0,004 мг/л), кельтаном до 1/300 от СК50 (0,007 мг/л) и сопровождается гибелью 10 – 60% рыб в течение 60 – 80 дней воздействия. Токсические концентрации других препаратов не установлены. На основании изучения экспериментальных и природных токсикозов у погибших рыб обнаружены остатки некоторых ХОС (см. таблицу).

Пестицид Виды рыб Органы Остатки ХОС, мг/кг 
 
 

      острое  отравление хроническое отравление

ГХЦГ (линдан) Радужная форель Печень 11,7 – 14,6  
 
 

      Мышцы 2,3 – 3,5  

ПХК Карпы (сеголетки) Внутренние органы 4,2 – 7.5 1,5 – 1, 6 
 

      Мышцы 1,6 – 1,8 0.1 – 0.5

Полидофен Карпы (сеголетки) Внутренние органы 3, – 3,9 1,5 
 

      Мышцы 0,3 – 1,5 0,1 – 0.5

Кельтан Карпы (сеголетки) Внутренние органы 8 – 24 1,5 – 4,4 
 

      Мышцы 5.8  

Тиодан(эндосульфан) Форель, хариус Жабры 

      0,4 – 1,5 
 

      Печень 

      0,6 – 4,5 
 

      Мышцы 

      0,3 – 1,0 

      Карповые рыба целиком 

      1.0 – 4,7 
 
 

В органах рыб, перенесших отравление, остатки ПХК, полидофена и кельтана обнаруживают до 50 дней, а в трупах рыб до 8. При хранении погибших рыб в холодильнике они сохраняются в тканях около 4 мес. 

При поступлении  ХОС с кормом интоксикация наступает  при достижении летального уровня их содержания в органах рыб, что  доказано на экспериментальной модели кумулятивного токсикоза. 

В естественных условиях уровень накопления ХОС в рыбах  зависит от объема применения и величины остатков пестицидов в сточных водах. В зонах с умеренным применением  хлорорганических пестицидов их остатки  во внутренних органах рыб составляют: планктонофагов (плотва, тюлька) – 0,01 – 0,5 мг/кг и хищников (судак, окунь, щука) – 0,2 – 2,5 мг/кг. В жировых отложениях возможно увеличение на 1 – 2 порядка. 

Из представителей зоопланктона наиболее чувствительны  к ХОС водные членистоногие и  ракообразные. Токсические концентрации для дафний находятся на уровне 0,001 мг/л, циклопов – более 0,01 мг/л. В  то же время простейшие, моллюски, хирономиды к ним довольно устойчивы. 

Симптомы и патоморфологические  изменения. Несмотря на различие в химической структуре, картина отравлений рыб  хлорорганическими пестицидами  однотипна. В первую очередь они  действуют на рыб как нервные  яды. 

Сроки появления  признаков отравления зависят от величины концентраций препаратов и  времени их воздействия. При остром отравлении они наступают через  несколько часов после начала контакта с ядом, а при хроническом  – через 7 – 10 дней. 

Наиболее бурно  симптомы проявляются при остром отравлении и характеризуются они  повышенной возбудимостью, резким повышением подвижности рыб, отсутствием реакции  на прикосновение к телу, нарушением координации движения (плавание по кругу, спирали, опрокидывание на бок) и полной потерей равновесия, замедлением  дыхания. В агональной стадии развиваются параличи, гибель наступает от паралича центра дыхания. При вскрытии погибших рыб обнаруживают выраженное полнокровие внутренних органов, особенно печени и предсердия, иногда встречаются мелкоточечные кровоизлияния в жабрах. Гистологическими исследованиями устанавливают застойную гиперемию сосудов печени, почек, головного мозга, зернистое и жировое перерождение, а при высоких концентрациях вакуольную дистрофию печеночных клеток (иногда их некробиоз), токсический отек жаберных лепестков, незначительное набухание респираторного эпителия. 

При хроническом  отравлении рыбы перестают потреблять корм, угнетены или ведут себя беспокойно, интенсивно плавают у поверхности  воды, затем они теряют равновесие, перевертываются на бок и погибают в состоянии депрессии. Печень погибших рыб набухшая, увеличена в объеме, с бледноватым оттенком. Отравление сопровождается тяжелыми дистрофическими  и некробиотическими изменениями  во внутренних органах и головном мозге. В печени обнаруживают обширные очаги зернисто-жировой и водяночной дистрофии, а также фокусы некробиоза печеночных клеток, снижение или отсутствие в них гликогена. Иногда в печени отмечают гипертрофию клеток с наличием в них митотических фигур деления, а также скопление в их цитоплазме липофусцина. 

В почках – дистрофия  и последующая деструкция эпителия канальцев. Отмечена дистрофия и  некробиоз клеток гемопоэтической  ткани. 

При высоких концентрациях  препаратов жаберные лепестки отечны, респираторный эпителий набухший, отслоен  от мембраны, частично десквамирован. При низких концентрациях эти изменения слабо выражены. Постоянно отмечают дистрофию нейронов головного мозга и инволюцию фолликулярного эпителия в яичниках. 

В случаях острого  и особенно хронического отравления устанавливают снижение уровня гемоглобина  и количества эритроцитов (на 10 – 20%), лейкопению (число лейкоцитов снижено  на 60%), нейтрофилию, лимфоцитопению. В эритроцитах отмечена гипохромазия, анизоцитоз, пойкилоцитоз, макро- и микроцитоз. 

При поступлении  пестицидов с кормом обнаруживают десквамативный катар кишечника, застойную гиперемию  и дегенеративно-некробиотические изменения в печени. 

Диагноз ставят на основании  комплексных исследований; анамнестических  данных, клинико-анатомической картины  интоксикации и обнаружения пестицидов в воде, грунте, органах рыб и  других гидробионтах. Хлорорганические пестициды в этих объектах определяют газохроматографическим методом согласно «Методическим указаниям по определению  ХОП и ПХБ при их совместном присутствии в объектах внешней  среды и биоматериале:», утвержденным Минздравом СССР. Для определения ПХК, полидофена и кельтана в воде и органах рыб разработаны и утверждены ГУВ Госагропрома СССР методы тонкослойной хроматографии. 

Прямым доказательством  отравления рыб служат обнаружение  ХОС в воде и органах рыб  на уровне вышеприведенных летальных  показателей и наличие клинико-анатомических  признаков интоксикации. В сомнительных случаях данные химического анализа  необходимо сравнивать с остатками  ХОС в органах рыб из благополучных  водоемов. В рыбах и других объектах из крупных естественных водоемов дополнительно  определяют содержание полихлорбифенилов. 

Профилактика заключается  в недопущении внесения ХОП в  водоохранной зоне, склоновых участках и основной водосборной площади водоемов, соблюдении правил применения, хранения, транспортирования и утилизации пестицидов, периодическом контроле их остатков в воде, грунте, гидробионтах. Присутствие ХОС в воде рыбохозяйственных водоемов не допускается. Допустимые остаточные количества гексахлорана (сумма изомеров) в рыбе 0,2 мг/кг, ДДТ в рыбе и рыбных консервах 0,2 мг/кг (временно), ПХК и ПХП не допускаются, для остальных ХОС не установлены. 

Рыба, содержащая остатки  хлорорганических пестицидов, реализуется  согласно санитарно-гигиеническим  правилам. [1–3] 
 

2. Хлорорганические  пестициды в продуктах питания  и методы их определения 
 

Молоко – объект индикации токсической нагрузки хлорорганических пестицидов на человека 

Применение персистентных  пестицидов в качестве химических средств  защиты растений от вредных организмов на культурах полевого севооборота, как правило, приводит к накоплению токсичных остатков действующих  веществ и продуктов их деградации в почве обработанных полей, последующей  миграции в объекты окружающей среды, и вторичному поступлению их в  растения полевых культур, что обусловливает  содержание остаточных количеств пестицидов в готовой сельскохозяйственной продукции [1, 2]. 

Товарная часть  растениеводческой продукции используется человеком как готовые пищевые  продукты и как сырье для их изготовления, а побочная – в  качестве зеленых кормов, силосной массы для домашних животных. Потребление  животными кормов, содержащих остатки  персистентных пестицидов, а человеком  загрязненных пищевых продуктов  растительного и животного происхождения  является основным путем поступления  токсичных веществ в его организм. 

При длительном поступлении  остатков пестицидов с пищевыми продуктами в организм человека или кормами  в организм животного токсичные  вещества постепенно накапливаются  в них и оказывают отрицательное  воздействие на разные функциональные системы организмов, вызывая нарушения  в их работе. Очищение от вредных  веществ осуществляется путем метаболического  превращения токсикантов до более подвижных в тканях соединений, способных легче исходных веществ выводиться из организма. Процесс выведения вредных действующих веществ и метаболитов пестицидов из организма теплокровных с биологическими жидкостями и фекальными массами очень продолжителен, а его интенсивность в большой мере связана со степенью токсической нагрузки ксенобиотиков на человека или животное [3]. 

Индикатором степени  и качества токсической нагрузки пестицидов на человека и домашних животных, живущих в определенном сельскохозяйственном регионе, могут  служить уровни содержания этих пестицидов в молоке человека и теплокровных животных. Однако наиболее удобным и доступным индикатором воздействия пестицидов на организмы можно считать молоко рогатого скота, в первую очередь – коровье. Большим достоинством данного объекта индикации токсической нагрузки является неограниченность возможности отбора биоматериала и бездефицитность объемов, необходимых для проведения санитарно-гигиенических исследований, поскольку стада рогатого скота имеются почти в каждом хозяйстве разных сельскохозяйственных регионов. 

Цельное коровье  молоко, и приготовленные из него молочные продукты, являются важным компонентом  пищевого рациона человека. Поэтому  содержание в молочных продуктах  вредных веществ (например, п, п'-ДДТ и его производные, изомеры ГХЦГ и др.) на уровнях, превышающих величину максимально допустимого уровня (МДУ), может стать причиной возникновения риска для здоровья населения. Среди разных возрастных групп населения, группой повышенного риска к воздействию хлорорганических пестицидов (ХОП) и продуктов их превращения считаются дети, потребляющие больше молочных продуктов, чем взрослые. Особому риску подвергаются дети младшего и раннего возраста, для которых молоко и молочные продукты являются основной и незаменимой частью пищевого рациона. Уменьшить воздействие ХОП на население позволяет санитарно-гигиенический контроль за соблюдением МДУ остаточных количеств пестицидов в пищевых продуктах, предлагаемых потребителю. 

Изучение уровней  токсической нагрузки персистентных  ХОП на крупный рогатый скот (КРС) и сельское население проводилось  в начале 90-х годов в одном  из хозяйств Киевской области. Исследовались  образцы цельного коровьего молока, а также местные зеленые корма  и силос, изготовленный из зеленой  массы растений, возделывавшихся  в хозяйстве культур. Указанные  образцы отбирались на фермах хозяйства  в разное время года и исследовались  на содержания остаточных количеств  инсектицидов ДДТ и ГХЦГ, то есть их действующих веществ и продуктов  превращения (п, п'- и о, п'-ДДТ, п, п'- и о, п'-ДДЭ, п, п'- и о, п'-ДДД; a-, g-, b-, d- изомеры ГХЦГ). Измерения массовой доли ХОП в исследовавшихся образцах выполнялись методом газожидкостной хроматографии на двух видах набивных колонок с использованием электроннозахватного детектора. Для селективного количественного анализа многокомпонентной смеси производных п, п'-ДДТ и изомеров ГХЦГ использовались стеклянные набивные колонки размером 1000x3 и 2000x3 мм, соответственно заполненные сорбентами Хроматон N-AW-DMCS (0,16–0,20 мм) с 5% неподвижной фазы SE-30 и Хроматон N-AW-HMCS (0,125–0,160 мм) со смесью неподвижных фаз 1,5% OV-17 + 1,95% QF-1 [4]. 

Надежность идентификации  соединений ХОП, обнаруженных методом  ГЖХ, подтверждена и другими хроматографическими методами (ВЭЖХ, ТСХ). 

Наблюдения за содержанием  ХОП в молоке, отбиравшегося в  летний период в течение двух лет  на фермах из холодильных установок, показали, что суммарные количества п, п'-ДДТ и его производных, а также суммарные количества изомеров ГХЦГ в исследовавшихся образцах, в основном, были ниже МДУ для молока и молочных продуктов, потребляемых населением (0,05 мг/кг), а также предназначенных для детского питания (табл. 1). Только в одном случае уровень суммарного содержания п, п'-ДДТ и его производных достигал МДУ, установленного для молочных продуктов детского питания (0,01 мг/кг) [5, 7–9]. Основными остатками ХОП в коровьем молоке являлись п, п'-ДДЭ – метаболит п, п'-ДДТ и g-изомер ГХЦГ. 

Из данных таблицы 1 видно, что уровни содержания ХОП  в молоке в разное время отбора проб несколько отличались. Это могло  быть связано как с изменением условий содержания животных (стойловый  или пастбищный режим содержания) в разные периоды года, так и  особенностями кормового рациона. Например, при скармливании коровам  сена и частичном докорме силосом (апрель) или при переходе на пастбищный выпас (июнь, июль) уровень содержания п, п'-ДДТ и его производных в молоке заметно увеличивался, а при введении в рацион зеленой массы сельскохозяйственных культур (сентябрь, ноябрь) – снижался. 

Суммарное содержание изомеров ГХЦГ в молоке увеличивалось  в тех случаях, когда кормовой рацион КРС большей частью состоял  из зеленых кормов (июль, ноябрь), выращенных на обработанных инсектицидом полях (табл. 2). При скармливании животным, в основном, сена и небольшого количества силоса, а также при выпасе на пастбище (апрель, июнь), загрязнение молока изомерами  ГХЦГ уменьшалось. 

Нами рассчитаны уровни возможного суточного поступления  ХОП в организм человека с учетом нормы суточного потребления  населением молока и молочных продуктов (в пересчете на молоко), составляющей 1,225 кг/сут [6]. Суммарное суточное поступление изомеров ГХЦГ колебалось от 0,001 до 0,007 мг/сут, а суммарное суточное поступление п, п'-ДДТ и его производных – в пределах от 0,003 до 0,01 мг/сут. Установленные уровни не превышали МДУ (табл. 3). 

В лаборатории экспертизы пищевых продуктов ежегодно осуществляется контроль за содержанием ХОП в  продуктах растительного и животного  происхождения, поступающих на прилавки продовольственных магазинов г. Киева. При проведении в 2002 году экспертных исследований молочной продукции установлено, что содержание остаточных количеств ХОП не превышало МДУ для молока и молочных продуктов (в пересчете на молоко) для взрослого и детского контингента населения. 

В число молочных продуктов, исследуемых на содержание п, п'-ДДТ и его производных, а также изомеров ГХЦГ, входили: твердые и плавленые сыры, сметана, творог, сырковая масса и другие виды молочной продукции (табл. 4). 

Остатки ХОП в  молочных продуктах, прошедших санитарно-гигиенический  контроль в 2002 году, обнаруживались, в  основном, в виде п, п'-ДДЭ-метаболита п, п'-ДДТ и g-изомера ГХЦГ. 

На основании данных таблицы 4 проведен расчет возможного суточного поступления ХОП в  организм человека, с молоком и  молочными продуктами, поступавшими на прилавки г. Киева (табл. 5). 

Согласно данным таблицы 5, суточное поступление суммарного количества изомеров ГХЦГ в организм человека с молочными продуктами в 2002 году составляло от 0,0001 до 0,0007 мг/сут, а суммарного количества п, п'-ДДТ и его производных – 0,0005–0,0028 мг/сут. 

Сравнивая уровни суточного  поступления ХОП в организм человека с молоком и молочными продуктами, установленные нами в начале 90-х  годов, с уровнями, выявленными в 2002 году, видно, что суточное поступление  изомеров ГХЦГ и производных п, п'-ДДТ с молоком в организм человека уменьшилось в 10 и 4–6 раз соответственно. 

Таким образом, количественное содержание изомеров ГХЦГ и производных  п, п'-ДДТ в молоке КРС отражает процесс постепенного снижения степени загрязнения объектов окружающей среды остатками инсектицидов и одновременно является индикатором возможной токсической нагрузки ХОП на животных и человека. 
 

Таблица 1. Уровни содержания ХОП в молоке коров (средние показатели по трем стадам хозяйства), 1990–1991 гг.

Время отбора проб молока (месяц) 

Сумма изомеров ГХЦГ (мг/кг) 

Сумма производных  п, п'-ДДТ (мг/кг)

Июнь 

0,0011

(0,0006–0,0017) 

0,0037

(0,0024–0,0057)

Сентябрь 

0,0015

(0,0012–0,0029) 

0,0030

(0,0024–0,0057)

Ноябрь 

0,0021

(0,0019–0,0029) 

0,0020

(0,0023–0,0042)

Апрель 

0,0014

(0,0010–0,0023) 

0,0109

(0,0030–0,0274)

Июль 

0,0054

(0,0027–0,0090)