Асептика и антисептика. 3

                                   Петрозаводский

                                          Государственный

                                           Университет

                         Медицинский факультет

            Кафедра пропедевтики внутренних  болезней

                                 Реферат на тему :

                          Асептика и антисептика 

                                                                      Работу выполнил студент                                  

                                                                      ПетрГу

                                                                      Медицинского факультета

                                                                      Специальности

                                                                       Лечебное дело

                                                                        Группа 307

                                                                        Петрище Илья.

                                     Петрозаводск,2013

                                         Содержание.

Асептика(понятие)……………………………………………………………………………1

Антисептика……………………………………………………………………………………1-2

Гигиеническая антисептика кожи рук……………………………………………3-4

Хирургическая антисептика кожи рук……………………………………………4-5

Местная и  общая антисептика………………………………………………………….5

Асептика…………………………………………………………………………………………5-7

Понятие и  разновидности химической стерилизации…………………7-9

Асептика — система мероприятий, направленных на предупреждение внедрения возбудителей инфекции в рану, ткани, органы, полости тела больного при хирургических операциях, перевязках и диагностических процедурах.

Она достигается  уничтожением микробов и их спор путем  дезинфекции и стерилизации с  использованием физических факторов и  химических веществ.

Выделяют 2 вида хирургической инфекции: эндогенный и экзогенный. Эндогенный источник находится в организме больного, экзогенный — в окружающей среде. В предупреждении эндогенного инфицирования основная роль принадлежит антисептике, экзогенного - асептике.

Борьба с  воздушной инфекцией - это прежде всего борьба с пылью. Основные мероприятия, направлены на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к следующему: устройство правильной вентиляции операционных и перевязочных; влажная уборка помещений, регулярное проветривание и облучение помещений УФЛ; сокращение времени контакта с воздухом открытой раны. Борьба с капельной инфекцией: запрещение разговоров в операционной, перевязочной, обязательное ношение марлевых повязок, своевременная текущая уборка операционных. Особое значение имеет соблюдение особого режима лечебного учреждения, с выделением специальных зон строгого режима.

Контактная  инфекция - стерилизация всех приборов, инструментов и материалов, соприкасающихся  с раной. Руки медработника и кожа больного подвергаются тщательной дезинфекции. Любые хирургические операции и  иные инвазивные манипуляции, связанные с нарушением целостности кожных покровов, должны производиться в условиях операционной или перевязочной с адекватной подготовкой кожи в области вмешательства (антисептическая обработка) и изоляцией операционного поля стерильными хирургическими покрытиями. Всегда предпочтительно использование одноразовых стерильных обкладочных материалов. Для профилактики попадания резидентной кожной флоры в операционную рану желательно нанести на подготовленное операционное поле разрезаемое адгезивное покрытие ,поддерживающее стерильный барьер между кожей пациента и руками хирурга, инструментами и т.п. до конца операции. Наилучшим решением является использование антимикробной разрезаемой пленки ,содержащей в своем составе комплексное соединение йода, активно подавляющее резидентную кожную флору на протяжении операции любой длительности. Важным является профилактика имплантантной инфекции (стерилизация шовного материала, дренажей и т.д. и, по возможности, более редком использовании оставляемых в ране инородных тел). Имплантанционная инфекция часто можект быть дремлющей и проявить себя через длительный период времени при ослаблении защитных сил организма.

Важным мероприятием по обеспечению асептики является санация  медицинского персонала. В случаях, когда санация не дает результатов, приходится прибегать к трудоустройству  носителей вне хирургических  отделений.

Антисептика — комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микробов в ране, другом патологическом образовании или организме в целом.

Различают:

Профилактическую  антисептику - проводится в целях  предупреждения попадания микроорганизмов  в рану или организм пациента (обработка  рук медперсонала, обработка антисептиком места инъекции и т.п.).

Лечебную  антисептику, которая включает: механические (удаление инфицированных и нежизнеспособных тканей, удаление инородных тел, первичная  хирургическая обработка ран, вскрытие затеков и карманов и т.д.), физические (гигроскопические повязки, растворы с  высоким осмотическим давлением, действие сухого тепла, ультразвука и др.); химические (использование различных  бактерицидных и бактериостатических  веществ); биологические (антибиотики, антитоксины, бактериофаги, протеолитические ферменты и т.п.) методы и их сочетание.

Руки медицинских  работников, принимающих участие  в оказании медицинской помощи, могут  быть фактором передачи патогенных и  условно- патогенных микробов. Микрофлора кожи рук представлена двумя популяциями: резидентной и транзиторной. Резидентная (постоянная) микрофлора обитает в роговом слое кожи, сальных и потовых железах, волосяных фолликулах и представлена эпидермальными стафилококками, дифтероидами, пропионибактериями и др. Видовой и количественный состав популяции резидентной микрофлоры относительно стабилен и в определенной мере формирует барьерную функцию кожи. В области околоногтевых складок и межпальцевых промежутков кроме указанных выше микроорганизмов вегетируют золотистые стафилококки, акинетобактерии, псевдомонады, кишечные палочки, клебсиеллы.

Указанные биотопы  для перечисленных групп бактерий являются естественной средой обитания.

Транзиторная  микрофлора попадает на кожу в процессе работы в результате контакта с инфицированными  пациентами или контаминированными объектами окружающей среды и сохраняется на коже рук до 24 часов. Она представлена облигатно- и условно-патогенными микроорганизмами (кишечная палочка, клебсиеллы, псевдомонады, сальмонеллы, кандиды, адено- и ротавирусы и др.), характерными для определенного профиля медицинского учреждения.

Механическое  воздействие на роговой слой кожи, приводящее к нарушению стабильности популяции резидентной микрофлоры (использование жестких щеток, щелочного  мыла для мытья рук, агрессивных  антисептиков, отсутствие смягчающих добавок в алкогольсодержащих антисептиках) способствует развитию дисбактериоза кожи. Проявлением последнего является преобладание в резидентной популяции грамотрицательной условно-патогенной микрофлоры, в том числе госпитальных штаммов, устойчивых к антибиотикам, антисептикам и дезинфектантам. В результате руки медицинских работников могут являться не только фактором передачи данных микроорганизмов, но и их резервуаром.

Если транзиторные микроорганизмы могут быть механически  удалены с кожи рук с помощью  обычного мытья рук или уничтожены при использовании антисептических  средств, то резидентную популяцию  микроорганизмов практически невозможно полностью удалить или уничтожить с помощью обычного мытья рук  или антисептической обработки. Стерилизация кожи рук не только невозможна, но и нежелательна, поскольку сохранение рогового слоя и относительной стабильности резидентной популяции микрофлоры препятствует колонизации кожи другими, гораздо более опасными микроорганизмами, прежде всего грамотрицательными бактериями.

В связи с  этим в западноевропейских странах  радикально изменены и усовершенствованы  травматичные, продолжительные по времени, родоначальные методики обработки рук (по Альфельду-Фюрбрингеру, Спасокукоцкому- Кочергину).

Из множества  существующих методик обеззараживания  кожи рук лишь одна имеет квалификационные признаки европейского стандарта и  зарегистрирована в установленном  порядке как "Европейская норма 1500" (EN 1500). Согласно регламенту Европейского комитета по стандартизации данной нормой руководствуются в Бельгии, Дании, Германии, Финляндии, Франции, Греции, Ирландии, Исландии, Италии, Люксембурге, Нидерландах, Норвегии, Австрии, Португалии, Швеции, Швейцарии, Испании, Чешской Республике, Великобритании.

Указанная методика является наиболее оптимальной для  гигиенической и хирургической  антисептики рук персонала учреждений здравоохранения и не требует  постоянного проведения бактериологического  контроля эффективности обеззараживания.

Гигиеническая антисептика кожи рук.

Показания к  гигиенической антисептике кожи рук:

до и после  контакта с инфекционными больными известной или предполагаемой этиологии (больные СПИД, вирусными гепатитами, дизентерией стафилокококковой инфекцией и т.д.);

контакт с  выделениями больных (гной, кровь, мокрота, испражнения, моча и т.д.);

до и после  мануальных и инструментальных исследований и вмешательств, не связанных с  проникновением в стерильные полости;

после посещения  бокса в инфекционных стационарах  и отделениях;

после посещения  туалета;

перед уходом домой.

Этапы гигиенической  антисептики кожи рук:

1. Антисептик  наносят на руки в количестве 3 мл и тщательно втирают в  ладонные, тыльные и межпальцевые  поверхности кожи рук в течение  30 - 60 сек в соответствии с прилагаемой  схемой до полного высыхания:

Тереть ладонью  о ладонь.

Левой ладонью  по тыльной стороне правой кисти  и наоборот.

Тереть ладони со скрещенными растопыренными пальцами.

Тыльной стороной согнутых пальцев по ладони другой руки.

Поочередно  круговыми движениями тереть большие  пальцы рук.

Поочередно  разнонаправленными круговыми движениями тереть ладони кончиками пальцев  противоположной руки.

2. При сильном  загрязнении биоматериалами (кровь,  слизь, гной и т.д.) сначала удаляют  загрязнения стерильным ватно-марлевым  тампоном или марлевой салфеткой,  смоченными кожным антисептиком. Затем на кисти рук наносят  3 мл антисептика и втирают  в кожу межпальцевых областей, ладонную и тыльную поверхности  до полного высыхания, но не  менее 30 секунд, после чего моют  проточной водой с мылом.

Хирургическая антисептика кожи рук.

Показания к  хирургической антисептике кожи рук: манипуляции, связанные с контактом (прямым или опосредованным) с внутренними  стерильными средами организма (катетеризация  центральных венозных сосудов, пункции  суставов, полостей, хирургические  вмешательства и т.д.).

Этапы хирургической  антисептики кожи рук:

В течение 2-х  минут кисти рук и предплечья моют без щеток под теплой проточной  водой с нейтральным жидким мылом (гигиеническое мытье), что способствует удалению загрязнений, снижает количество транзиторной микрофлоры на руках медицинского персонала).

Кисти рук  и предплечья высушивают стерильной салфеткой.

В течение 5 мин тщательно втирают антисептик порциями по 2,5 - 3 мл в кожу кистей рук  и предплечий по стандартной методике, не допуская высыхания кожи. Общий  расход антисептика | в соответствии с инструкцией к препарату.

Руки высушивают на воздухе.

На сухие  руки надевают стерильные перчатки.

После проведения хирургических манипуляций и  снятия перчаток руки моют теплой водой  с жидким мылом в течение 2-х  минут. Для предупреждения сушащего действия спиртов в течение 1-3 минут  наносят крем.

Требования  к проведению антисептики рук:

втирать антисептик только в сухую кожу;

использовать  адекватные уровню обработки количества антисептика (избегать излишков), для  чего необходимо использовать локтевые дозаторы;

не применять  салфетки, губки, тампоны, иные инородные  предметы для нанесения препарата;

чередовать использование антисептиков, содержащих активно действующие вещества с разными механизмами антимикробного действия;

тщательность  выполнения техники проведения обработки;

соблюдать последовательность действий, дозировку препарата и  экспозиции обработки на каждом этапе.

Местная и  общая антисептика.

В зависимости  от метода применения антисептических  средств различают местную и  общую антисептику. Местная антисептика, в свою очередь, делится на поверхностную (использование присыпок, мазей, аппликаций, промывание ран и полостей) и глубокую (инъекция препарата в области раны или воспалительного очага - обкалывания, блокада).

Под общей  антисептикой понимают насыщение организма  антисептическим средством (антибиотики, сульфаниламиды), поступающим в очаг инфекции с током крови или  воздействующим на микрофлору, содержающуюся в крови.

Применяя  тот или иной вид антисептики, следует учитывать его возможные  побочные действия, которые в ряде случаев могут оказаться опасными, вызывая интоксикацию (химическая антисептика), повреждение жизненно важных анатомических  образований (механическая антисептика), фотодерматиты (физическая антисептика), аллергические реакции, дисбактериоз, кандидомикозы (биологическая антисептика) и т.д.

Средства, применяемые  для антисептики, должны отвечать следующим  требованиям:

обладать  широким спектром действия (бактери-, вирули-, фунги-, туберкулоцидным);

быстро достигать  эффекта;

достигать полного  уничтожения транзиторной микрофлоры;

добиваться  снижения обсемененности постоянной микрофлорой  до безопасного уровня;

обладать  достаточно продолжительным действием  после обработки (в течение трех часов);

должны отсутствовать  кожно-раздражающий, аллергенный, канцерогенный, мутагенный и другие побочные эффекты;

обеспечивать  медленное развитие резистентности микроорганизмов; быть экономически доступными.

Асептика.

Асептика - метод  профилактики (стерилизация инструментов и др.), направленный против проникновения  микробов в рану, ткани или полости  тела при операциях и т.д.

Профилактика  имплантационной инфекции заключается  в тщательной стерилизации приборов, шовного материала, дренажей, эндопротезов и т. п. Эта инфекция может быть дремлющей и проявлять себя через длительный период времени, при ослаблении защитных сил организма человека.

Особое значение профилактика имеет при пересадке  органов и тканей, так как применяются  методы для ослабления защитных сил  организма. Асептика - закон хирургии. Достигается она применением  физических факторов и химических веществ.

Высокая температура, вызывающая денатурацию белков микробной  клетки, наиболее часто применялась  в прежнее время.

Чувствительность  микробов к высокой температуре  зависит от их вида, штамма и состояния  микробной клетки (делящиеся и  молодые бактерии более чувствительны, споры более устойчивы к высокой  температуре). В щелочной и кислой среде поражаемость микробных клеток высокая. Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.

Ультрафиолетовые  лучи способны поражать микробов, находящихся  в воздухе, на коже, тканях человека, на стенах и полу помещений. Гамма-лучи - это радиоактивные изотопы .Стерилизация проводится в специальных камерах. Стерилизуется белье, шовный материал, системы для переливания крови и др. Работают специально обученные люди, обеспеченные мощными защитными приспособлениями. Особенно полезна лучевая стерилизация предметов из пластмасс, не выдерживающая высокой температуры и пара под давлением.

Термическая стерилизация, то есть высокой температурой, является основным методом обеззараживания, применяемого в медицинской практике. Верхняя граница вегетирующих микроорганизмов 50 °С, а спор столбнячной палочки -- в кипящей воде (до 60 мин.) Наиболее эффективным видом стерилизации любой формы бактерий является воздействие пара под давлением. Через 25 мин погибает любая инфекция, а наиболее распространенная - через 1-2 мин (132 °С). Обжиг применяется лишь в лабораторной практике для стерилизации пластиковых игл и петель, используемых в бактериологических лабораториях и в чрезвычайных ситуациях - при угрозе жизни больного.

Стерилизация  сухим жаром проводится в сухожаровых стерилизаторах при температуре 180-200 °С. Стерилизуются инструменты, посуда и др. Этот вид стерилизации широкое распространение нашел в зубоврачебной практике.

Кипячение производится в кипятильниках: переносных и стационарных. Используют кипяченую дистиллированную воду с добавлением гидрокарбоната натрия из расчета 2,0 г на 100,0 г воды. Получается 2%-й раствор и температура  кипения воды увеличивается на 1-2 °С.

Стерилизация  паром под давлением проводится в автоклавах. Они могут быть стационарные и походные. В зависимости от давления пара (кгс/см2) температура поднимается  до строго определенных цифр, например, при давлении пара 1,1 кгс/см2 температура  в автоклаве поднимается до 121,2 °С; при 2 кгс/см2 - до 132,9 °С и т. д. Отсюда и экспозиция стерилизации от 60 мин до 15 мин. Проводится контроль стерильности. Он может быть бактериологическим, техническим и термическим. Бактериологический метод самый точный, но результат выдается слишком поздно. Берут образцы стерилизовавшегося материала и сеют на питательные среды. Технические методы используются при установке нового автоклава. Термические методы используются повседневно. Они основаны либо на изменении цвета вещества, либо на плавлении вещества.

Проба Микулича: на белой фильтровальной бумаге пишут  простым карандашом "стерильно" и смазывают поверхность бумажки 10%-м раствором крахмала. Когда  бумажка подсохнет, ее смазывают раствором Люголя. Бумажка темнеет, слово "стерильно" не видно. Ее закладывают в толщу стерилизуемого материала в автоклав. При 100 °С крахмал соединяется с йодом и слово "стерильно" снова становится видно. Экспозиция должна быть не менее 60 мин.

Более эффективны пробы с порошкообразными веществами, которые плавятся при определенной температуре: сера -- при 111-120 °С, резорцин - 110-119 °С; бензойная кислота - 121 °С, мочевина - 132 °С; фенацетин - 134-135 °С.

Для контроля сухожаровой стерилизации: тиомочевина - 180 °С; янтарная кислота - 180-184 °С; аскорбиновая кислота - 187-192 °С; барбитал - 190-191 °С; пилокарпина гидрохлорид - 200 °С.

Понятие и  разновидности химической стерилизации.

Химические  вещества, применяемые для стерилизации, должны быть бактерицидными и не портить  инструменты и материалы, с которыми они соприкасаются.

В последнее  время все шире стала использоваться стерилизация холодным способом, с  помощью антисептических веществ. Причиной этого служит то обстоятельство, что в медицинской практике используются предметы, изготовленные из пластических масс. Их нельзя стерилизовать термическими методами. К ним относятся аппараты искусственного кровообращения (АИК), аппараты для наркоза, искусственной  вентиляции легких и т. д. Разбирать  такие аппараты сложно и трудно, да и не под силу медицинским работникам. Стало быть нужны методы, позволяющие стерилизовать аппарат в целом, виде либо разобранном на крупные узлы.

Химическую  стерилизацию можно провести либо с  помощью растворов, включая аэрозоли (растворы ртути, хлора и т. д.), либо газами (пары формалина, смесь ОБ).

Стерилизация  растворами химических веществ

Карболовая  кислота входит в тройной раствор (раствор Крупенина). Им стерилизуют  режущие инструменты и предметы из пластмасс. В нем хранятся простерилизованные иглы, скальпели, корнцанги, полиэтиленовые трубки.

Лизол с зеленым  мылом используется для помывки  стен, полов, мебели операционно-перевязочного  блока, а также для обработки  инструментов, резиновых перчаток, предметов, загрязненных гноем или  калом во время операции.

Сулема (дихлорид ртути) 1 : 1000, 1 : 3000 Стерилизуются перчатки, дренажи и другие предметы.

Оксицианид ртути 1 : 10000 применяется для стерилизации мочеточниковых катетеров, цистоскопов и других инструментов с оптикой.

Диоцид - препарат ртути, сочетает в себе антисептические и моющие свойства. Некоторые используют для обработки рук хирурга - руки моют в тазу раствором 1 : 3000, 1 : 5000 - 6 мин.

Этиловый  спирт применяется для стерилизации режущих инструментов, резиновых  и полиэтиленовых трубок, 96%-м спиртом  дубят руки хирурги перед операцией (см. подготовка рук хирурга).

Хотя 70%-й  спирт бактерициднее 96%-го, однако спорообразная инфекция не погибает длительное время. Возбудители газовой гангрены и споры сибирской язвы могут сохраняться в спирте в течение нескольких месяцев (Н. С. Тимофеев и соавт., 1980 г.).

Для увеличения бактерицидности спиртовых растворов  к ним добавляются тимол (1 : 1000), 1%-й раствор бриллиантового зеленого (раствор Баккала), формалин и др.

Давно используются бактерицидные свойства галогенов. Н. И. Пирогов применял йод спиртовый 2%-й, 5%-й и 10%-й, еще не зная о существовании микроорганизмов. Йод обладает бактерицидным и спороцидным эффектом. Он и ныне не утратил своего значения. Однако чаще используют его комплексные соединения с поверхностью - активными веществами, так называемыми. йодофорами, к которым относятся йодонат, йодопиродон, йодолан и др. Они чаще применяются для обработки рук хирурга и операционного поля.

Соединения  хлора издавна используются для  дезинфекции (хлорная известь) и  стерилизация (гипохлорид натрия, хлорамин и др.). Бактерицидность этих препаратов зависит от содержания в них активного хлора. В хлорамине активного хлора 28-29 %, а дихлоризоциануровой кислоте - 70-80 %, гипохлориде натрия - 9,5 %.

Перекись  водорода (33 % перекись водорода - пергидроль) в 3 % и 6 % концентрации используется для  стерилизации и дезинфекции Она  безвредна для человека.

Смесь перекиси водорода с муравьиной кислотой, предложенная И. Д. Житнюком и П. А. Мелехоым в 1970 г., была названа первомуром. В процессе приготовления С-4 образуется надмуравьиная кислота - она и является действующим началом. Используется для обработки рук хирурга или стерилизации инструментов (способ приготовления С-4, см. Практическое руководство по общей хирургии).

В Чехословакии предложили перстерил для стерилизации резиновых и полиэтиленовых трубок.

В России выпущен бета-пропиолактон. В концентрации 1 : 1000 синегнойная палочка в 2%-м растворе погибает в течение 10 мин.

Стерилизация  газами

Стерилизация  газами достаточно перспективна. Она  не повреждает стерилизуемых объектов, не изменяет их свойств.

Наибольшее  практическое значение имеет стерилизация парами формалина. Стерилизуются цистоскопы, катетеры и другие предметы в стеклянных цилиндрах.

Широко используется окись этилена. Бактерицидное действие происходит за счет алкилирования протеинов бактерий. Окись этилена растворима в воде, спирте, эфире. Применяются автоматические газовые стерилизаторы МСВ - 532 с полезным объемом 2,3 л. При концентрации окиси этилена 555 мг/л стерильность тест - объектов достигается через 2 - 4 часа. При этом через 1 час погибают стрептококк, кишечная палочка, синегнойная палочка. Через 2 часа погибают микрококк и через 4 - 7 часов стафилококк. Наиболее резистентны сенная палочка и плесневой грибок, что связано с большим содержанием в них липидов. При сокращении экспозиции до 3-х часов концентрацию препарата увеличивают до 8500 - 1000 мг/л. В связи с тем, что окись этилена взрывоопасна ее чаще всего используют в смеси с инертными газами (10% окиси этилена и 90% углекислоты). Эта смесь в литературе обозначается как картокс или карбоксид. Активность окиси этилена возрастает при повышении температуры (в 2,74 раза на каждые 100 oС повышения температуры). Обычный температурный режим 45 - 65 oС с часовой экспозицией и концентрацией препарата 1000 мг/л С помощью газовой стерилизации следует обрабатывать лишь те объекты, которые не выдерживают стерилизацию в автоклаве и сухожаровой камере. Все предметы, которые подверглись воздействию окиси этилена должны проветриваться в течение 24 - 72 часов.

Список литературы:

Бородин Ф.Р.. Избранные лекции. М.: Медицина, 1961.

Заблудовский П.Е. История отечественной медицины. М., 1981.

Зеленин С.Ф. Краткий курс истории медицины. Томск, 1994.

Сточник А.М. Избранные лекции по курсу истории медицины и культурологии. – М., 1994.

Сорокина Т.С. История медицины. –М.,1994.

Справочник врача общей практики/ Н. П. Бочков, В. А. Насонов, Н. Р. Палеева.Москва: Эксмо-Пресс, 2002.